Über Kamelie

Kamelien gehören zu den beliebtesten Ziergehölzen. Sie werden auch als Königinnen der Winterblumen bezeichnet. Sie sind attraktiv, immergrüne Sträucher, die wegen ihrer schönen Blüten und ihres prächtigen immergrünen Laubs extensiv angebaut werden.

Kamelie ist eine Pflanzengattung aus der Familie der Theaceae. Sie bestehen aus einer Reihe von 100-300 tropischen und subtropischen Arten, hauptsächlich aus den Regionen Ost- und Südasiens, vom Himalaya im Osten bis nach Japan und Indonesien.

Kamelien werden bis zu 20 Meter hoch und haben wechselständig angeordnete Blätter, einfach, dick, gezähnt, und glänzend. Ihre Blüten sind groß und auffällig mit fünf bis neun Blütenblättern in ihrer natürlich vorkommenden Art. Sie erscheinen im Allgemeinen im späten Winter, aber einige Sorten blühen im Spätherbst oder Mitte des Frühlings.

Diese Pflanzen haben mehrere wirtschaftliche Verwendungen wie Blätter C. sinensis sind beliebte Tees, die in den Regionen Ostasiens verwendet werden, Südostasien, und die indischen Subkontinente; C. japonica, C. sasanqua , und ihre Hybriden sind Zierpflanzen, die als Gartensorten verwendet werden; und C. oleifera produziert Teesamenöl, das in der Küche und in der Kosmetik verwendet wird.

Über die Pflege der Pflanzen, sie bevorzugen feucht, gut durchlässiger Boden, mit einem pH-Wert von 6,5; Sie müssen einige Jahre lang regelmäßig gewässert werden, um sie nass zu halten. aber überflute sie nicht, und oft ist ein Beschneiden erforderlich, um überkreuzte Gliedmaßen oder krankes/totes Holz zu entfernen.

Gewebekultur der Kamelie

Die herkömmlichen Techniken zum Züchten von Kamelie sind Schneiden, Pfropfung, oder Samen verwenden. Aber, diese Techniken sind mühsam und für die Verwendung im kommerziellen Maßstab ineffizient. Und, Gewebekultur ist die beste Alternative. Basierend auf dem Zweck wird die In-vitro-Vermehrung von Pflanzen in zwei Gruppen eingeteilt:

• Durch die Verwendung von Triebspitzen, schießen tipps, und Achselknospen als Explantate, die für eine schnelle klonale Vermehrung nützlich sind, Produktion von virusfreien Pflanzen, und Erhaltung genetischer Ressourcen.
• Durch die Verwendung von Adventivembryonen oder -knospen, die in Kalluskulturen oder direkt aus somatischen Geweben gebildet wurden, die Anwendungen in der schnellen Massenvermehrung oder in Züchtungsprogrammen haben, in denen zygotische Embryonen aus inkompatiblen Kreuzungen gewonnen, sind kultiviert.

Das Verfahren der Gewebekultur

Hier ist ein Verfahren zur Gewebekultur von C. sasanqua unter Verwendung von Knotenexplantaten. das stammt aus dem Torres K.C. (1989)Mikropropagation von Kamelie. In:Gewebekulturtechniken für Gartenbaukulturen. Springer, Boston, MA. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-9756-8_10.

Benötigte Materialien

2000-ml-Becher und 250-ml-Becher, sterile Petrischalen aus Kunststoff oder Glas, Bunsenbrenner, Zange, Skalpelle, Kulturröhrchen, 20% Clorox-Lösung, Zwischen 20, steriles destilliertes Wasser, 95% Ethanol, IBA-Lösung, MS-Medien, Zucker, Agar, Thiamin, Myo-Inositol, BA, NAA, GA3, Torf, und Vermiculit.

Gründung von Shootings

• Bereiten Sie ein Triebinitiierungsmedium vor, das Thiamin enthält (1,0 mg/Liter), Myo-Inositol (100,0 mg/Liter), und BA (1,0 mg/Liter).
• Geben Sie die Medien in Kulturröhrchen ab und sterilisieren Sie sie 15 Minuten lang bei 121 Grad Celsius.
• Sammeln Sie Knotenexplantate von krankheitsfreien Pflanzen und sterilisieren Sie 1 Minute in 95 % Ethanol und dann 10 Minuten lang in 20 % Clorox-Lösung.
• Danach, Explantate dreimal mit sterilem destilliertem Wasser spülen.
• Jedes Explantat in den Kulturröhrchen 3 Wochen lang bei 25 °C in völliger Dunkelheit inokulieren. Nach 3 Wochen, die Kulturen für den Rest der 12-wöchigen Etablierungszeit bei 25 °C in schwache Lichtverhältnisse bringen.

Multiplikation schießen

• Bereiten Sie das mit Thiamin (1,0 mg/Liter) angereicherte Sprossvermehrungsmedium vor, Myo-Inositol (100,0 mg/Liter), BA (2,0 mg/Liter), NAA (0,1 mg/Liter), und GA3 (5,0 mg/Liter).
• 10 ml/Röhrchen-Medium in Kulturröhrchen geben und sterilisieren.
• Sammle die etablierten Triebe, 10 mm lang, und übertragen Sie ein Explantat in jedes Röhrchen. Dann, inkubieren Sie die Kulturen bei 25 ° C unter schwachen Lichtbedingungen.
• Nach 8 Wochen, Übertragen Sie die Explantate in ein frisches Medium enthaltendes Röhrchen.

Bewurzelung der regenerierten Triebe

• Bereiten Sie ein Wurzelmedium mit Thiamin (1,0 mg/Liter) und Myo-Inositol (100,0 mg/Liter) vor und stellen Sie den pH-Wert auf 5,0 ein.
• Geben Sie 10 ml Medium in jedes Kulturröhrchen und sterilisieren Sie es.
• 100 ml einer 0,5 g/Liter IBA-Lösung vorbereiten und sterilfiltrieren.
• Sammle die Triebe aus dem Multiplikationsschritt, ab 20 mm Länge, und weichen Sie den 7,5 mm Mikroschnitt 30 Minuten lang in der IBA-Lösung ein.
• Übertragen Sie die Mikroschnitte in jedes Kulturröhrchen und inkubieren Sie sie 8 Wochen lang bei 20°C unter schlechten Lichtverhältnissen.
• Nachdem sich auf einem Steckling eine Wurzelmasse gebildet hat, die Kultur unter Aufhellungsbedingungen unter Wachstumsbedingungen platzieren, mit abgenommenem Schlauchverschluss, zum Härten.
• Nach 2 Wochen in der Härteumgebung, Stecklinge in 5-cm2-Torftöpfe übertragen, die die Bodenmischung mit 3 Teilen Rinde enthalten, 1 Teil Torf, und 1 Volumenteil Vermiculit und stellen Sie die Töpfe unter intermittierenden Nebel.

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